原代细胞的分离培养:
原代培养即直接从有机体取下细胞、组织或器官,让它们在体外维持与生长。原代培养的特点是细胞或组织刚离开机体,它们的生物性状尚未发生很大的改变,在一定程度上可反映它们在体内的状态,表现出来源组织或细胞的特性, 因此用于药物实验,尤其是药物对细胞活动、结构、代谢、有无毒性或杀伤作用等,是的工具。常用的原代培养法有组织块培养法和消化培养法。
(一)组织块培养法
许多实验室喜欢用组织块培养法进行原代培养,因为方法简单,细胞也较容易生长。尤其是培养心肌,有时还可观察到心肌组织块搏动。细胞从组织块边缘向外长出并铺满培养皿或培养瓶后, 即可进行传代。
1. 设备材料
培养箱、冰箱、超净工作台/无菌间、无菌吸管、离心管、酒精灯、试管架、培养瓶、培养皿、消化液、基础培养液、胎牛血清、Hanks 溶液、双抗试液、剪刀、摄子、小烧杯。
2. 操作步骤
(1) 在无菌条件下,取待培养的组织适量,置入小烧杯中, 以适量Hanks 溶液清洗2~3 次,去掉组织块表面的血污。
(2)用眼科剪将组织块反复剪成0.5~ 1mm3的小块。
(3)再用Hanks 溶液反复漂洗, 直至液体不混浊为止。等组织块下沉,将烧杯倾斜,用小吸管尽量吸除Hanks 溶液。
(4)用含20%灭活血清及双抗溶液(200U/ml、200μg/ml)的培养液再清洗,用吸管吸干后加入5ml 含20%血清的培养液。
(5)用弯头吸管吸取组织小块,均匀地置于培养皿内表面,吸去多余的培养液,各组织小块之间相距0.5cm 为宜。盖好培养皿盖,做好标记, 置37°C 的CO2培养箱内。
(6) 2~4h 后,于超净工作台中,缓缓地向培养皿中加入上述含20%血清及双抗溶液( 100U/ml 及100μg/ml )的培养液少量,以使组织块浸没在培养液中。
(7)轻轻地将培养皿及组织块移至CO2 培养箱, 如无特殊情况,不必观察。1~2 周后,可观察到细胞从组织块边缘长出,形成生长晕。
(9) 一般说来,若培养液无明显改变, 1 周换液1 次即可。待细胞长满整个培养皿内表面,即可进行传代培养。
大鼠子宫内膜上皮细胞
细胞基本属性:
产品名称 | 大鼠子宫内膜上皮细胞 | 组织来源 | 子宫 |
种属 | 大鼠 | 生长特性 | 贴壁生长 |
形态特征 | 上皮细胞样 | 英文名称 | Rat Endometrial Epithelial Cells |
货号 | EY-XY3464 | 规格 | 5x105cells/T25或1mL冻存管 |
质量检测:广谱角蛋白(PCK)免疫荧光染色为阳性,纯度高于 90%,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等
产品规格:5x105cells/T25或1mL冻存管
培养基:大鼠子宫内膜上皮细胞培养基
培养条件:气相:95%空气+5%二氧化碳;温度:37℃
换液频率:每2-3天换液一次
消化液:0.25%
产品货期现货,1周左右
运输方式T25培养瓶/ 顺丰快递(包邮)
供应限制仅限于科学研究,绝不可作为动物或人类疾病的治疗产品使用
背景介绍:
大鼠子宫内膜上皮细胞采用先胶原酶消化、后组织贴块法,结合上皮细胞专用培养基培养筛选制备而来,细胞总量约为5×10⁵cells/瓶。大鼠子宫内膜上皮细胞分离自子宫组织;子宫是孕育胎儿的器官,位于盆腔中部,膀胱与直肠之间,其位置可随膀胱与直肠的充盈程度或体位而有变化。子宫的正常位置主要依靠子宫诸韧带、盆膈、尿生殖膈及会阴中心腱等结构维持,这些结构受损或松弛时,可以引起子宫脱垂。子宫内膜即黏膜,由上皮(属单层柱状上皮,有分泌细胞和纤毛细胞二种)和固有膜(由结缔组织构成,其内有大量的星形细胞,称为基质细胞)组成, |
公司正在出售的产品:
血管紧张素原抗体
组织样品组织D(CATHEPSIN D)活性荧光定量检测试剂盒
组蛋白H3-S10磷酸化检测试剂盒
pBaBe-PURO+MiRNA
冰冻切片组织CYTOCHROME C蛋白表达荧光显微镜检测试剂盒
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组织3-磷酸甘油醛脱氢酶(GAPDH)活性酶动力比色法
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组织(THROMBIN)活性比色法定量检测试剂盒
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中心体蛋白290抗体
合酶结构域蛋白1抗体
溶质载体家族17成员9抗体
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细胞周期蛋白依赖性激酶抑制蛋白3抗体
巴尔得-别德尔综合征相关蛋白5抗体
磷酸化B-Raf重组兔单克隆抗体
大鼠子宫内膜上皮细胞CD20重组兔单克隆抗体
操作方法:
组织块直接培养法(原代细胞培养实验)
材料与仪器
【动物】选择大约一半足孕时间的胚胎,10-13天龄胚胎含有最大数量的未分化的间质细胞,成纤维细胞可从这些细胞衍生获得。每组小鼠胚胎10个【实验材料】每组的超净台中有以下物品:1.50ml配制好的RPMI1640培养液1瓶;8ml小牛血清(FCS)1瓶;100ml 0.25%瓶;PBS(-)1瓶2.100ml灭菌烧杯36个;3、50ml离心筒36个4、灭菌培养皿10个,细胞培养瓶10个5、1ml,200μl移液器各1支;枪头盒36个;无菌玻璃搅拌棒10个6、细胞计数板1块;7、灭好菌的镊子1把,剪刀1把;8、酒精灯1台;
步骤
1) 胚胎的分离。适用哺乳动物(仓鼠、小鼠和大鼠)2)将1-36个胚胎转移至一个小的无菌培养皿中,用新的无菌剪刀小心地绞碎胚胎,用PBS漂洗。3)在无菌状态下,将绞碎的胚胎转移于一50ml的无菌离心筒中,加入40ml 0.25%的无菌,用搅拌棒轻轻搅动。4)在温暖的环境中或置于37°C培养箱中轻轻摇动15分钟。5)让存留的组织块在重力作用下慢慢沉降,将含有悬浮细胞的液体转移至一无菌50ml的离心管中,该管内按照每10ml上清加入l ml小牛血清的比例加入牛血清以灭活,。6)加人新鲜溶液(见前述步骤)于含有残留未消化组织块的原来的50ml离心筒中,重复步骤4和5。7)离心混合的细胞悬液,1200r/rain,5分钟,弃上清。8)用新鲜的无菌PBS重悬沉淀的细胞,按步骤7再次离心。9)用PBS反复洗涤细胞直至上清清亮为止。
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